FH-Prof. Dr. Herbert Wank Lehre und Forschung herbert.wank@fh-campuswien.ac.at T: +43 1 606 68 77-3514 F: +43 1 606 68 77-3509Raum: OG.A.04 Helmut Qualtinger Gasse 2 1030 Wien Lehrveranstaltungen 2018/19 Applied Life Sciences > Berufspraktikum PRMolekulare Biotechnologiemore Berufspraktikum PR Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank, FH-Prof. Dr. Paul Watson 0 SWS 25 ECTS Lehrinhalte Das Berufspraktikum dient den Studierenden als Einstieg in das selbständige Arbeiten. Die Aufgaben beginnen mit der Suche einer geeigneten Praktikumsstelle und einer Berufspraktikumsbetreuerin/eines Berufspraktikumsbetreuers. Die Studierenden lernen unter Betreuung einer facheinschlägigen Person die Berufspraxis eines Biotechnologieunternehmens/Forschungsinstitutes kennen, und/oder eigenständiges wissenschaftliches Arbeiten. Im Berufspraktikum werden die im Studium erworbenen Fach, - Methoden– und Sozialkompetenzen im angestrebten beruflichen Tätigkeitsfeld umgesetzt und praktisch gefestigt.Ein weiterer wichtiger Lehrinhalt ist die selbständige Verfassung der Praktikums Ergebnisse in Form eines Berufspraktikumsberichts sowie die Dokumentation der wissenschaftlicher Ergebnisse. Prüfungsmodus Gutachten der/des PraktikumsbetreuerIn Lehr- und Lernmethode Praktikum Sprache Deutsch-Englisch > Methoden der DNA-Analyse VOMolekulare Biotechnologiemore Methoden der DNA-Analyse VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte BiotechnologieRekombinante DNA - KlonierungRestriktionsenzyme, Enzyme der KlonierungPlasmide – Vektoren - KlonierungsvektorenLigation - TransformationExpressionsvektoren – rekombinante ProteinexpressionKlonierungsstrategienBakterienstämme Prüfungsmodus schriftliche Prüfung am Ende der LV Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Deutsch > Molekularbiologie & Genetik I VOMolekulare Biotechnologiemore Molekularbiologie & Genetik I VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 2 SWS 3 ECTS Lehrinhalte Eine Reise durch die Zelle: Was ist ein Gen? Was ist DNA, Hybridisierung, Methoden der Analyse der Genexpression, inkl. DNA-Chips. Dynamik der DNA (Replikation, Repair, Rekombination), Zentrales Dogma, Struktur und Funktion der RNA, Transkription, Translation, genetischer Code und den Mechanismen der differentiellen Genaktivität. Mutation. Genisolierung (Klonieren), Grundlagen der Vorwärts- und Reversgenetik, Modellorganismen, Genomforschung.Der genetische Dschungel: Vorwärtsgenetik (Mendelsche Genetik), Meiose inkl. Fehler der Meiose, Rekombination, Genkartierung. Was ist der Phänotyp? Monofaktorielle Erbkrankheiten und multifaktorielle Krankheiten. Klinische Phänotypen. Abweichungen vom mendelschen Erbgang (Penetranz, Lokusheterogenität, Allelheterogenität, etc.). Der Zellzyklus mit biochemischer Struktur der DNA, Chromatin, Nukleosom, DNA-Replikation, inklusive Telomer-Replikation, Methoden wie PCR und DNA-Sequenzierung, Mutationshäufigkeiten und DNA-Repair, Einzelprozesse der Mitose, Kontrollpunkte im Zellzyklus, Cytostatika, Regulation durch Proteinkinasen).Die Inhalte sind abgestimmt auf die VO Allgemeine Biologie: Evolution, inkl. Mutation und Selektion, molekulare Evolution (rRNA-Gene), Endosymbiontentheorie, u.a. Diese Vorlesung legt die Grundlage für eine Vorlesung gleichen Namens im 2. Semester, in dem die selben Themen vertieft werden, mit Schwerpunkt auf molekularbiologische Methoden. Prüfungsmodus schriftliche Prüfung am letzten Tag der LV bzw. nach Vereinbarung mit den Studierenden. 24 Punkte, 12 Punkte für genügend. Lehr- und Lernmethode FrontalunterrichtCD-Lernprogramm von Hoffmann-LaRoche, Präsentation und Selbststudium (jeder Student hat eigene CD)Powerpoint-PräsentationenTafelDown-loads > Molekularbiologie & Genetik II VOMolekulare Biotechnologiemore Molekularbiologie & Genetik II VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 2 SWS 3 ECTS Lehrinhalte Genexpression allgemein und bei Prokaryoten: RNA-Polymerase, Promotor-Terminator, Transkription, Translation, Antibiotika.Genexpression bei Eurkaryoten: Genome, Genomgrößen, repetitive DNA, mobile Gene. reversible Chromatinstruktur. Eukaryotische Promotoren, RNA-Prozessierung. Post-translationale Modifikation: Signalpeptide, Translation an rauhem ER, Proteinabbau.Signaltransduktion bei Prokaryoten und Eukaryoten: Response-Regulatoren, verschiedene Rezeptoren (G-Protein-gekoppelt, Tyrosinkinase-gekoppelt, etc.), Ionenkanäle, sekundäre messenger (cAMP, cGMP, NO, etc.)Regulation der Genexpression bei Prokaryoten: Lac-Operon, Tryp-Operon. Transformation, Transduktion, Konjugation.Viren: lytischer und lysigener Zyklus, Grippevirus, HIV.Prinzipien der Genklonierung: Restriktionsenzyme, Vektoren und Wirte (Expression in Prokaryoten, in Hefe, in Pflanzen, in Säugetier-Zellen). Prüfungsmodus schriftliche Prüfung am letzten Tag der LV bzw. nach Vereinbarung mit den Studierenden. 24 Punkte, 12 Punkte für genügend. Lehr- und Lernmethode FrontalunterrichtPowerpoint-PräsentationenTafelDown-loads Sprache Deutsch-Englisch > RNA Lab LABMolecular Biotechnologymore RNA Lab LAB Vortragende: Andrea Steinbauer, BSc MSc, FH-Prof. Dr. Herbert Wank 3 SWS 3 ECTS Lehrinhalte RNA Methoden: Beispiel 1: Northern Blot (Glukose/Galaktose Metabolismus in Hefe, RNA Extraktion aus Hefe, denaturierendes RNA Agarosegel, RNA-Transfer, Spezifische Oligonukleotidhybridisierung, Bandendetektion)Beispiel 2: EMSA (in vitro Transkription mit T7 RNA Polymerase, RNA Reinigung, RNA Faltung, native Polyakrylgelelektrophorese, RNA-Färbung mittels Methylenblau, Detektion des RNP-Komplexes)Beispiel 3: RNA Stabilität. Die Stabilität von RNA wird durch Inkubation unter verschiedenen Bedingungen getestet. Die Stabilität wird auf einem Agarosegel analysiert. Prüfungsmodus Die Note setzt sich aus folgenden Teilbereichen zusammen: Anwesenheit, Motivation, Mitarbeit, praktisches Geschick, schriftliches Protokoll Lehr- und Lernmethode Übung Sprache Englisch > RNA Lab LABMolecular Biotechnologymore RNA Lab LAB Vortragende: Andrea Steinbauer, BSc MSc, FH-Prof. Dr. Herbert Wank 3 SWS 3 ECTS Lehrinhalte RNA Methoden: Beispiel 1: Northern Blot (Glukose/Galaktose Metabolismus in Hefe, RNA Extraktion aus Hefe, denaturierendes RNA Agarosegel, RNA-Transfer, Spezifische Oligonukleotidhybridisierung, Bandendetektion)Beispiel 2: EMSA (in vitro Transkription mit T7 RNA Polymerase, RNA Reinigung, RNA Faltung, native Polyakrylgelelektrophorese, RNA-Färbung mittels Methylenblau, Detektion des RNP-Komplexes)Beispiel 3: RNA Stabilität. Die Stabilität von RNA wird durch Inkubation unter verschiedenen Bedingungen getestet. Die Stabilität wird auf einem Agarosegel analysiert. Prüfungsmodus Die Note setzt sich aus folgenden Teilbereichen zusammen: Anwesenheit, Motivation, Mitarbeit, praktisches Geschick, schriftliches Protokoll Lehr- und Lernmethode Übung Sprache Englisch > RNA Lab LABMolecular Biotechnologymore RNA Lab LAB Vortragende: Andrea Steinbauer, BSc MSc, FH-Prof. Dr. Herbert Wank 3 SWS 3 ECTS Lehrinhalte RNA Methoden: Beispiel 1: Northern Blot (Glukose/Galaktose Metabolismus in Hefe, RNA Extraktion aus Hefe, denaturierendes RNA Agarosegel, RNA-Transfer, Spezifische Oligonukleotidhybridisierung, Bandendetektion)Beispiel 2: EMSA (in vitro Transkription mit T7 RNA Polymerase, RNA Reinigung, RNA Faltung, native Polyakrylgelelektrophorese, RNA-Färbung mittels Methylenblau, Detektion des RNP-Komplexes)Beispiel 3: RNA Stabilität. Die Stabilität von RNA wird durch Inkubation unter verschiedenen Bedingungen getestet. Die Stabilität wird auf einem Agarosegel analysiert. Prüfungsmodus Die Note setzt sich aus folgenden Teilbereichen zusammen: Anwesenheit, Motivation, Mitarbeit, praktisches Geschick, schriftliches Protokoll Lehr- und Lernmethode Übung Sprache Englisch > RNA VOMolecular Biotechnologymore RNA VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte RNA Grundlagen, RNA-Struktur, katalytische RNAs, RNA Prozessierung, RNA Splicing, RNA Editing, Riboswitches , RNA Anwendungen, Non-coding RNAs, RNA Welt, SELEX Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung nach Abschluß der Lehrveranstaltung Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Englisch > RNA VOMolecular Biotechnologymore RNA VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte RNA Grundlagen, RNA-Struktur, katalytische RNAs, RNA Prozessierung, RNA Splicing, RNA Editing, Riboswitches , RNA Anwendungen, Non-coding RNAs, RNA Welt, SELEX Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung nach Abschluß der Lehrveranstaltung Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Englisch > RNA VOMolecular Biotechnologymore RNA VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte RNA Grundlagen, RNA-Struktur, katalytische RNAs, RNA Prozessierung, RNA Splicing, RNA Editing, Riboswitches , RNA Anwendungen, Non-coding RNAs, RNA Welt, SELEX Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung nach Abschluß der Lehrveranstaltung Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Englisch > Zellbiologie der Eukaryoten VOMolekulare Biotechnologiemore Zellbiologie der Eukaryoten VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 2 SWS 3 ECTS Lehrinhalte Struktur und Funktion der zellulären Organellen (Kern, Mitochondrien, endoplasmatische Retikulum, Golgi, ect.) und zellulären Strukturen (Cytoskeleton). Aufbau, Eigenschaften und Funktion von Biomembranen.Ionenkanal und Transporter vermittelter Transport von kleinen Molekülen durch Membranen. Proteintransport in Organellen sowie in und aus Zellen (endocytosis/secretion). Das Cytoskelett: Aufbau, regelnde Proteine und Rolle im intrazellulären Transport. Kontakt/Kommunikation zwischen Zellen über Verbindungen; das Konzept der Gewebe und der extrazellularen Matrix. Komplizierte Prozesse, die einige Eigenschaften integrieren: Ausbreitung des Aktionspotentials entlang Nervenzellen; Muskelkontraktion, Energieumwandlung in den Mitochondrien. Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung Lehr- und Lernmethode Powerpoint Präsentation. Sprache Deutsch PublikationenAn der FH Campus Wien verfasste Publikationen von Herbert Wank finden Sie in unserer Publikationsdatenbank, ebenso die betreuten Abschlussarbeiten. Alle anderen Publikationen sind im Personal Webspace angeführt. Studiengänge Molecular Biotechnology Masterstudium, Vollzeit more Molekulare Biotechnologie Bachelorstudium, Vollzeit more Forschungsprojekte > Fleischallergie - Chrakterisierung von Fleischallergenen für die verbesserte Diagnose von FleischallergienLeitung: Univ. Doz.in Dr.in Ines Swoboda
> Berufspraktikum PRMolekulare Biotechnologiemore Berufspraktikum PR Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank, FH-Prof. Dr. Paul Watson 0 SWS 25 ECTS Lehrinhalte Das Berufspraktikum dient den Studierenden als Einstieg in das selbständige Arbeiten. Die Aufgaben beginnen mit der Suche einer geeigneten Praktikumsstelle und einer Berufspraktikumsbetreuerin/eines Berufspraktikumsbetreuers. Die Studierenden lernen unter Betreuung einer facheinschlägigen Person die Berufspraxis eines Biotechnologieunternehmens/Forschungsinstitutes kennen, und/oder eigenständiges wissenschaftliches Arbeiten. Im Berufspraktikum werden die im Studium erworbenen Fach, - Methoden– und Sozialkompetenzen im angestrebten beruflichen Tätigkeitsfeld umgesetzt und praktisch gefestigt.Ein weiterer wichtiger Lehrinhalt ist die selbständige Verfassung der Praktikums Ergebnisse in Form eines Berufspraktikumsberichts sowie die Dokumentation der wissenschaftlicher Ergebnisse. Prüfungsmodus Gutachten der/des PraktikumsbetreuerIn Lehr- und Lernmethode Praktikum Sprache Deutsch-Englisch
> Methoden der DNA-Analyse VOMolekulare Biotechnologiemore Methoden der DNA-Analyse VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte BiotechnologieRekombinante DNA - KlonierungRestriktionsenzyme, Enzyme der KlonierungPlasmide – Vektoren - KlonierungsvektorenLigation - TransformationExpressionsvektoren – rekombinante ProteinexpressionKlonierungsstrategienBakterienstämme Prüfungsmodus schriftliche Prüfung am Ende der LV Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Deutsch
> Molekularbiologie & Genetik I VOMolekulare Biotechnologiemore Molekularbiologie & Genetik I VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 2 SWS 3 ECTS Lehrinhalte Eine Reise durch die Zelle: Was ist ein Gen? Was ist DNA, Hybridisierung, Methoden der Analyse der Genexpression, inkl. DNA-Chips. Dynamik der DNA (Replikation, Repair, Rekombination), Zentrales Dogma, Struktur und Funktion der RNA, Transkription, Translation, genetischer Code und den Mechanismen der differentiellen Genaktivität. Mutation. Genisolierung (Klonieren), Grundlagen der Vorwärts- und Reversgenetik, Modellorganismen, Genomforschung.Der genetische Dschungel: Vorwärtsgenetik (Mendelsche Genetik), Meiose inkl. Fehler der Meiose, Rekombination, Genkartierung. Was ist der Phänotyp? Monofaktorielle Erbkrankheiten und multifaktorielle Krankheiten. Klinische Phänotypen. Abweichungen vom mendelschen Erbgang (Penetranz, Lokusheterogenität, Allelheterogenität, etc.). Der Zellzyklus mit biochemischer Struktur der DNA, Chromatin, Nukleosom, DNA-Replikation, inklusive Telomer-Replikation, Methoden wie PCR und DNA-Sequenzierung, Mutationshäufigkeiten und DNA-Repair, Einzelprozesse der Mitose, Kontrollpunkte im Zellzyklus, Cytostatika, Regulation durch Proteinkinasen).Die Inhalte sind abgestimmt auf die VO Allgemeine Biologie: Evolution, inkl. Mutation und Selektion, molekulare Evolution (rRNA-Gene), Endosymbiontentheorie, u.a. Diese Vorlesung legt die Grundlage für eine Vorlesung gleichen Namens im 2. Semester, in dem die selben Themen vertieft werden, mit Schwerpunkt auf molekularbiologische Methoden. Prüfungsmodus schriftliche Prüfung am letzten Tag der LV bzw. nach Vereinbarung mit den Studierenden. 24 Punkte, 12 Punkte für genügend. Lehr- und Lernmethode FrontalunterrichtCD-Lernprogramm von Hoffmann-LaRoche, Präsentation und Selbststudium (jeder Student hat eigene CD)Powerpoint-PräsentationenTafelDown-loads
> Molekularbiologie & Genetik II VOMolekulare Biotechnologiemore Molekularbiologie & Genetik II VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 2 SWS 3 ECTS Lehrinhalte Genexpression allgemein und bei Prokaryoten: RNA-Polymerase, Promotor-Terminator, Transkription, Translation, Antibiotika.Genexpression bei Eurkaryoten: Genome, Genomgrößen, repetitive DNA, mobile Gene. reversible Chromatinstruktur. Eukaryotische Promotoren, RNA-Prozessierung. Post-translationale Modifikation: Signalpeptide, Translation an rauhem ER, Proteinabbau.Signaltransduktion bei Prokaryoten und Eukaryoten: Response-Regulatoren, verschiedene Rezeptoren (G-Protein-gekoppelt, Tyrosinkinase-gekoppelt, etc.), Ionenkanäle, sekundäre messenger (cAMP, cGMP, NO, etc.)Regulation der Genexpression bei Prokaryoten: Lac-Operon, Tryp-Operon. Transformation, Transduktion, Konjugation.Viren: lytischer und lysigener Zyklus, Grippevirus, HIV.Prinzipien der Genklonierung: Restriktionsenzyme, Vektoren und Wirte (Expression in Prokaryoten, in Hefe, in Pflanzen, in Säugetier-Zellen). Prüfungsmodus schriftliche Prüfung am letzten Tag der LV bzw. nach Vereinbarung mit den Studierenden. 24 Punkte, 12 Punkte für genügend. Lehr- und Lernmethode FrontalunterrichtPowerpoint-PräsentationenTafelDown-loads Sprache Deutsch-Englisch
> RNA Lab LABMolecular Biotechnologymore RNA Lab LAB Vortragende: Andrea Steinbauer, BSc MSc, FH-Prof. Dr. Herbert Wank 3 SWS 3 ECTS Lehrinhalte RNA Methoden: Beispiel 1: Northern Blot (Glukose/Galaktose Metabolismus in Hefe, RNA Extraktion aus Hefe, denaturierendes RNA Agarosegel, RNA-Transfer, Spezifische Oligonukleotidhybridisierung, Bandendetektion)Beispiel 2: EMSA (in vitro Transkription mit T7 RNA Polymerase, RNA Reinigung, RNA Faltung, native Polyakrylgelelektrophorese, RNA-Färbung mittels Methylenblau, Detektion des RNP-Komplexes)Beispiel 3: RNA Stabilität. Die Stabilität von RNA wird durch Inkubation unter verschiedenen Bedingungen getestet. Die Stabilität wird auf einem Agarosegel analysiert. Prüfungsmodus Die Note setzt sich aus folgenden Teilbereichen zusammen: Anwesenheit, Motivation, Mitarbeit, praktisches Geschick, schriftliches Protokoll Lehr- und Lernmethode Übung Sprache Englisch
> RNA Lab LABMolecular Biotechnologymore RNA Lab LAB Vortragende: Andrea Steinbauer, BSc MSc, FH-Prof. Dr. Herbert Wank 3 SWS 3 ECTS Lehrinhalte RNA Methoden: Beispiel 1: Northern Blot (Glukose/Galaktose Metabolismus in Hefe, RNA Extraktion aus Hefe, denaturierendes RNA Agarosegel, RNA-Transfer, Spezifische Oligonukleotidhybridisierung, Bandendetektion)Beispiel 2: EMSA (in vitro Transkription mit T7 RNA Polymerase, RNA Reinigung, RNA Faltung, native Polyakrylgelelektrophorese, RNA-Färbung mittels Methylenblau, Detektion des RNP-Komplexes)Beispiel 3: RNA Stabilität. Die Stabilität von RNA wird durch Inkubation unter verschiedenen Bedingungen getestet. Die Stabilität wird auf einem Agarosegel analysiert. Prüfungsmodus Die Note setzt sich aus folgenden Teilbereichen zusammen: Anwesenheit, Motivation, Mitarbeit, praktisches Geschick, schriftliches Protokoll Lehr- und Lernmethode Übung Sprache Englisch
> RNA Lab LABMolecular Biotechnologymore RNA Lab LAB Vortragende: Andrea Steinbauer, BSc MSc, FH-Prof. Dr. Herbert Wank 3 SWS 3 ECTS Lehrinhalte RNA Methoden: Beispiel 1: Northern Blot (Glukose/Galaktose Metabolismus in Hefe, RNA Extraktion aus Hefe, denaturierendes RNA Agarosegel, RNA-Transfer, Spezifische Oligonukleotidhybridisierung, Bandendetektion)Beispiel 2: EMSA (in vitro Transkription mit T7 RNA Polymerase, RNA Reinigung, RNA Faltung, native Polyakrylgelelektrophorese, RNA-Färbung mittels Methylenblau, Detektion des RNP-Komplexes)Beispiel 3: RNA Stabilität. Die Stabilität von RNA wird durch Inkubation unter verschiedenen Bedingungen getestet. Die Stabilität wird auf einem Agarosegel analysiert. Prüfungsmodus Die Note setzt sich aus folgenden Teilbereichen zusammen: Anwesenheit, Motivation, Mitarbeit, praktisches Geschick, schriftliches Protokoll Lehr- und Lernmethode Übung Sprache Englisch
> RNA VOMolecular Biotechnologymore RNA VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte RNA Grundlagen, RNA-Struktur, katalytische RNAs, RNA Prozessierung, RNA Splicing, RNA Editing, Riboswitches , RNA Anwendungen, Non-coding RNAs, RNA Welt, SELEX Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung nach Abschluß der Lehrveranstaltung Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Englisch
> RNA VOMolecular Biotechnologymore RNA VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte RNA Grundlagen, RNA-Struktur, katalytische RNAs, RNA Prozessierung, RNA Splicing, RNA Editing, Riboswitches , RNA Anwendungen, Non-coding RNAs, RNA Welt, SELEX Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung nach Abschluß der Lehrveranstaltung Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Englisch
> RNA VOMolecular Biotechnologymore RNA VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 1 SWS 2 ECTS Lehrinhalte RNA Grundlagen, RNA-Struktur, katalytische RNAs, RNA Prozessierung, RNA Splicing, RNA Editing, Riboswitches , RNA Anwendungen, Non-coding RNAs, RNA Welt, SELEX Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung nach Abschluß der Lehrveranstaltung Lehr- und Lernmethode Vorlesung Sprache Englisch
> Zellbiologie der Eukaryoten VOMolekulare Biotechnologiemore Zellbiologie der Eukaryoten VO Vortragende: FH-Prof. Dr. Herbert Wank 2 SWS 3 ECTS Lehrinhalte Struktur und Funktion der zellulären Organellen (Kern, Mitochondrien, endoplasmatische Retikulum, Golgi, ect.) und zellulären Strukturen (Cytoskeleton). Aufbau, Eigenschaften und Funktion von Biomembranen.Ionenkanal und Transporter vermittelter Transport von kleinen Molekülen durch Membranen. Proteintransport in Organellen sowie in und aus Zellen (endocytosis/secretion). Das Cytoskelett: Aufbau, regelnde Proteine und Rolle im intrazellulären Transport. Kontakt/Kommunikation zwischen Zellen über Verbindungen; das Konzept der Gewebe und der extrazellularen Matrix. Komplizierte Prozesse, die einige Eigenschaften integrieren: Ausbreitung des Aktionspotentials entlang Nervenzellen; Muskelkontraktion, Energieumwandlung in den Mitochondrien. Prüfungsmodus Schriftliche Prüfung Lehr- und Lernmethode Powerpoint Präsentation. Sprache Deutsch