Personendetails

1. Isolierung von Zellen

2. Hayflicklimit, Telomere und Telomerase

3. Spezialisierte Zellen

4. Etablierung von kontinuierlich wachsenden Zellinien (Immortalisierung)

5. Tissue engineering, Organkultur

6. Zellkulturlabor, Steriltechnik und Kryokonservierung

7. Kultivierungsmethoden, Zellzahl, Medien und Zusätze

8. Zellliniencharakterisierung

9. Anwendungen von tierischen Zelllinien und Entwicklung rekombinanter Zelllinien

Vorlesung, Präsentation von Powerpoint Folien; Internet Recherche

Endprüfung

schriftliche Endprüfung

Totalprotein Bestimmung, Immunologische Detektionsmethoden (ELISA, bead based Array, Protein Arrays, Western Blot, ...) Interaktionsanalysen (SPR, BLI,...) Proteomics (Massen Spektrometrie, 2 D Gel Elektrophorese) Elektrophorese (SDS PAGE, Blue Native,...), Chromatographie, Enzymatische Analysen, ...

Vertiefendende Kenntnisse physiko-chemischer, methodischer und instrumenteller Grundlagen der Bioanalytik; Grenzen der Analytik; Datenauswertung;

Flipped Classroom und Problem Based Learning in Präsenzeinheit

Endprüfung

schriftliche Prüfung; Präsentation mit mündlicher Prüfung

Umfasst nach Bedarf und praktischer Möglichkeit: Biochemische Trennverfahren, immunchemische und enzymatische Methoden (z.B. ELISA, Western Blot, Enzymanalytik), Proteinanalytik, Kohlenhydratanalytik

Praktische Übung

Endprüfung

Abgabe eines wissenschaftlichen Protokols

Übergeordnete Themen

- Vorstellung von dem FH-Labor und den darin befindlichen Gerätschaften (Vorsichtsmaßnahmen und Verhalten hierzu)

- Aufbau wissenschaftlicher Texte

- Beurteilung der Qualität von wissenschaftlichen Innhalten

- Wissenschaftliche Literatursuche

Labormethoden

- Proteinbestimmungen

- Elektrophorese (SDSPAGE)

- WesternBlot

- ELISA

Michaelis Menten

Vortrag; Es wird die Auswertung von verschiedenen bioanalytischen Analysen geübt, sowie die Beurteilung von Prozessen der Biopharmazeutikaentwicklung.

Endprüfung

schriftliche Prüfung

Aufgabenstellung:

Einschleusen eines yeGFP Genes in eine Hefe mittels CRISPR/CAS9

Erstellen eines entsprechenden Konzeptes und präsentieren dieses Konzeptes mit allen relevanten Eckdaten.

Übung / Seminar

Endprüfung

Präsentation und Abgabe eines Konzeptes

Herstellung eines Expressionsvektors zur Produktion von L-Milchsäure in Saccharomyces cerevisiae

1.) Isolierung des L-Lactat-Dehydrogenasegens aus Lactobacillus plantarum

2.) Konstruktion und Vermehrung des Expressionsvektors in E. coli

3.) Einbringen des Expressionsvektors in den Zielorganismus S. cerevisiae und Messung der LDH-Aktivität

Übung. Student*innen führen selbstständig molekularbiologische Methoden durch und werten diese aus.

Endprüfung

Abgabe eines wissenschaftlichen Protokolls

Geschichtlicher Zusammenhang

Genom, Transkriptom und Proteom

Unterschiede zwischen Eukaryoten, Prokaryoten, Archaea und Viren.

Replikation - Transkription - Translation

Mutationen und Rekombination

Struktur der DNA; DNA-Basen; DNA-Basen-Veränderungen; DNA Schaden und Reparatur

weitere Methoden der DNA Analytik

Sequenziertechnologie

Agarose Gel Elektrophorese

DNA Extraktionen

Nucleinsäure Quantifizierung

PCR / qPCR

Micro Arrays

FISH

Blotting Techniken

Transfektion, Transduktion (Methoden)

Genom Editing (CRISPR, Zn Finger, …)

Plasmide Komponenten Aufbau…

Expressions Wirte

Zelllinienentwicklung

Praktische Beispiele

Primerdesign, Massenberechnungen analytischer Restriktionsverdauung

Vorlesung; es werden auch praktische Fähigkeiten wie Primerdesign und ähnliches vermittelt.

Endprüfung

Endprüfung

Die Zelle, die Zellmembran (Bauplan, Eigenschaften, Lipid-, Proteinkomponente, Transportvorgänge), Zellorganellen (ER, Golgi, Microbodies, Lysosomen, Vakuolen, Mitochondrien, Chloroplasten), der Zellkern (Chromosomen, Nucleolus), Speicherung und Information (Gene, Transkription, mRNAs Dynamik, Translation, non-coding RNAs), Gene Therapie, Proteine und ihre vielfältigen Aufgaben (Enzyme, Antikörper, Struktur- und Motorproteine), Bioenergetik (Formen der Energiespeicherung und –Gewinnung in der Zelle),Zellteilung (Mitose),Gewebe – Zusammenhalt von Zellen, Zelluläre Bestandteile des menschlichen Immunsystems.

Vorlesung/Vortrag

Endprüfung

Endprüfung, Standard (schriftliche Prüfung)

Bespielhafte Implementierung einer Analysenmethode zur Vertiefung und Übung im Themengebiet Validierung analytischer Methoden

Praktikum mit Vortrag

Aktive Teilnahme

Beurteilung der Erledigung der praktischen Aufgaben und der erstellten Dokumente (SOP, Validierungsplan, Formblätter, Aufzeichnungen) hinsichtlich gebrauchsorientierter Gestaltung und Inhalt, sowie deren termingerechte Abgabe.

Übung der im Rahmen der Diplomprüfung abzuhaltenden Präsentation.

- Was ist besonders bei der Präsentation einer wissenschaftlichen Arbeit zu beachten?

- Feedback erhalten & geben.

Präsentationen

Beurteilung der Präsentation (Aufbau, Gestaltung der Folien, Vortragsstil, Einhaltung der zeitlichen Vorgaben).

Übung der im Rahmen der Diplomprüfung abzuhaltenden Präsentation.

- Was ist besonders bei der Präsentation einer wissenschaftlichen Arbeit zu beachten?

- Feedback erhalten & geben.

Präsentationen

Beurteilung der Präsentation (Aufbau, Gestaltung der Folien, Vortragsstil, Einhaltung der zeitlichen Vorgaben).

- Einleitung in die Eukaryoten-Zellkultur

- Best Practices zum Schutz von Zellbanken vor Mykoplasmenkontamination

- Molekulare Techniken zur Erkennung und Verhinderung einer Mykoplasmenkontamination

- Charakterisierung genetischer Variationen

Erlernen praktischer Fähigkeiten

Immanente Leistungsüberprüfung

Protokollabgabe

Einleitung in die Eukaryoten-(Säugetier)-Zellkultur

Grundmethoden: Auftauen, Passagieren, Ausäen, Ernten, Einfrieren

Transfektionsmethoden: Co-Präzipitation und Lipofektion

Einfluss von unterschiedlichen Plasmidsequenzen oder Zelllinien auf das Produkt

Analyse: Fluorometrie, Cytotoxizität, Proteingehalt (spezifisch vs. gesamt)

Vortrag, praktische Übungen, Diskussion

Prüfungsimmanent/Protokoll